NADH氧化酶(NOX)試劑盒

NADH氧化酶(NOX)試劑盒

NADH氧化酶(NOX)試劑盒

本試劑盒僅供科研使用 1 NADH 氧化酶（NADH oxidase，NOX）試劑盒說明書 （貨號：WS3080F 分光法 48 樣） 一、產品簡介： NADH 氧化酶（NOX，EC 1.6.99.3）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中， 可在氧氣存在下，直接將 NADH 氧化為 NAD。該酶不僅參與 NAD 的再生，而且與免疫 反應密切相關。 NOX 能夠將 NADH 氧化為 NAD，通過檢測 NADH 于 340nm 處的下降速率，即可得 出 NADH 氧化酶活性的大小。 二、試劑盒組分與配制： 試劑名稱 規格 保存要求 備注 試劑一 液體 60mL×1 瓶 -20℃保存 試劑二 液體 10mL×1 瓶 -20℃保存 試劑三 液體 32mL×1 瓶 4℃保存 試劑四 粉劑×1 支 4℃保存 用前甩幾下或離心使粉劑落入底 部，再加 1.5mL 蒸餾水溶解備用 試劑五 粉劑×3 支 -20℃保存 用前甩幾下或離心使粉劑落入底 部，每支再加 0.5mL 蒸餾水溶解， 用不完的試劑分裝后-20℃保存， 禁止反復凍融，三天內用完。 三、所需的儀器和用品： 紫外分光光度計、1mL 石英比色皿（光徑 1cm）、低溫臺式離心機、水浴鍋、可調式移 液器、研缽、冰、蒸餾水。 四、NADH 氧化酶（NOX）活性測定： 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定，了解本批樣品情況，熟悉實驗流程，避免實驗 樣本和試劑浪費！ 1、線粒體制備（提示：整個線粒體的提取過程須保持 4℃低溫環境）： ① 稱取約 0.2g 組織或收集 1000 萬細菌/細胞，加入 1mL 試劑一，用冰浴勻漿器或研缽冰 浴勻漿，轉移至離心管后于 4℃×3000g 離心 20min。 ② 小心吸取上清液（棄沉淀）移至另一離心管中，4℃×16000g 離心 20min。用移液器移 除上清液（上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的 NOX（此 步可選做））。留下沉淀（沉淀即為線粒體）。 ③ 在沉淀（線粒體）中加入 200μL 試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超 聲 5s，間隔 3s，重復 30 次），液體置于冰上用于線粒體 NOX 酶活性測定。 【注】：若增加樣本量，可按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例進行提取，或按照細 菌/細胞數量（104）：提取液（mL）為 500~1000：1 的比例進行提取。 2、上機檢測： 1 紫外分光光度計預熱 30min 以上，設定溫度 25℃，調節波長至 340nm，蒸餾水調零。 2 所有試劑解凍至室溫（25℃）。 ③ 在 1mL 石英比色皿中依次加入： 試劑名稱（μL） 測定管 試劑三 640 試劑四 20本試劑盒僅供科研使用 2 試劑五 20 混勻，室溫（25℃）靜置 3min 樣本 60 混勻，室溫（25℃）立即于 340nm 處讀 取 A1，5min 后讀取 A2，△A=A1-A2 【注】若△A 的值在零附近，可以延長反應時間 T（如至 10min 或更長），則改變后的 反應時間 T 需代入公式重新計算。 五、結果計算： 1、按樣本蛋白濃度計算： 酶活定義：每毫克組織蛋白每分鐘氧化 1 nmol NADH 定義為一個酶活單位。 NOX（nmol/min /mg prot）=[ΔA÷（ε×d）×V2×109]÷(V1×Cpr) ÷T=396.6×ΔA÷Cpr 2、按樣本鮮重計算： 酶活定義：每克組織每分鐘氧化 1 nmol NADH 定義為一個酶活單位。 NOX（nmol/min /g 鮮重）=[ΔA÷（ε×d）×V2×109]÷(W× V1÷V)÷T=79.3×ΔA÷W 3、按細菌或細胞密度計算： 酶活定義：每 1 萬個細菌或細胞每分鐘氧化 1 nmol NADH 定義為一個酶活力單位。 NOX（nmol/min /104 cell）=[ΔA÷（ε×d）×V2×109]÷(500×V1÷V)÷T=0.16×ΔA ε---NADH 摩爾消光系數，6.22×103 L/mol/cm； d---光徑，1cm； V--- 加 入 提 取 液 體 積 ， 0.2mL ； V1--- 加 入 樣 本 體 積 ， 0.06mL ； V2---反應體系總體積，7.4×10-4 L； T---反應時間，5min； W---樣本質量，g； 500---細胞或細菌總數，500 萬； Cpr---樣本蛋白質濃度，mg/mL；建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒。